Aproximaciones para mejorar el crecimiento de bacterias lácticas iniciadoras OM13 durante las primeras etapas de producción de aceitunas verdes de mesa estilo español

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.3989/gya.0103181

Palabras clave:

Aceituna, Cultivos iniciadores, Evaluación sensorial, Fermentación, Microbiología de Alimentos

Resumen


La presente investigación tuvo como objetivo establecer las condiciones óptimas para la fermentación láctica de aceitunas verdes de mesa estilo español. El trabajo se centra en el seguimiento del rendimiento de la cepa iniciadora comercial Lactobacillus pentosus OM13 aplicando una etapa de aclimatación, adición de nutrientes y concentraciones de ácido láctico que fueron previamente investigadas. La aclimatación de las células garantizó la dominancia del cultivo iniciador, incluso a un nivel de inoculación 2 ciclos Log menor que el utilizado habitualmente en una fermentación estándar. Se encontró un efecto significativo en términos de cinéticas de acidificación en la primera semana de fermentación, donde el mayor descenso de pH de ~2,5 unidades ocurrió en el ensayo inoculado con 106 CFU/mL del iniciador después de la aclimatación (EO3), que mostró valores similares al control C obtenido con Lactobacillus pentosus OM13 a la concentración de 107 CFU/mL. Después del día 3, hasta el 30 se observaron descensos adicionales de pH hasta 4,30, manteniéndose casi constantes hasta el final del proceso (día 190) donde se alcanzaron los menores valores en el ensayo EO3 y el control. Los resultados de dinámicas microbiológicas, cambios en COVs y el efecto de los procesos en el análisis sensorial del producto fermentado se estudiaron mediante análisis multivariante. El proceso de aclimatación y el nivel de inoculación inicial influenciaron la microflora bacteriana, los compuestos aromáticos y las características organolépticas del producto final. Por último, los ensayos C, EO2 y EO3 mostraron un valor mayor (60-80%) de preferencias y satisfacción comparada con otras producciones experimentales.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Aponte M, Blaiotta G, La Croce F, Mazzaglia A, Farina V, Settanni L, Moschetti G. 2012. Use of selected autochthonous lactic acid bacteria for Spanish- style table olive fermentation. Food Microbiol. 30, 8–16.

Arroyo-López FN, Querol A, Bautista-Gallego J, Garrido- Fernández A. 2008. Role of yeasts in table olive production. Int. J. Food Microbiol. 128, 189–196.

Castro A de, Montaño A, Casado FJ, Sánchez A H, Rejano L. 2002. Utilization of Enterococcus casseliflavus and Lactobacillus pentosus as starter cultures for Spanish-style green olive fermentation. Food Microbiol. 19(6), 637–644.

Chasseriaud L, Krieger-Weber S, Déléris-Bou M, Sieczkowski N, Jourdes M, Teissedre PL, Claisse 0, Lonvaud-Funel A. 2015. Hypotheses on the effects of enological tannins and total red wine phenolic compounds on Oenococcus oeni. Food Microbiol. 52, 131–137.

Corona O, Alfonzo A, Ventimiglia G, Nasca A, Francesca N, Martorana A, Moschetti G, Settanni L. 2016. Industrial application of selected lactic acid bacteria isolated from local semolinas for typical sourdough bread production. Food Microbiol. 59, 43–56.

Francesca N, Barbera M, Martorana A, Saiano F, Gaglio R, Aponte M, Moschetti G, Settanni L. 2016. Optimised method for the analysis of phenolic compounds from caper (Capparis spinosa L.) berries and monitoring of their changes during fermentation. Food Chem. 196, 1172–1179. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.10.045

Gaglio R, Scatassa ML, Cruciata M, Miraglia V, Corona O, Di Gerlando R, Portolano B, Moschetti G, Settanni L. 2014. In vivo application and dynamics of lactic acid bacteria for the four-season production of Vastedda-like cheese. Int. J. Food Microbiol. 177, 37–48.

Gaglio R, Francesca N, Maniaci G, Corona O, Alfonzo A, Giosuè C, Di Noto A, Cardamone C, Sardina MT, Portolano B, Alabiso, M. 2016a. Valorization of indigenous dairy cattle breed through salami production. Meat Sci. 114, 58–68.

Gaglio R, Cruciata M, Di Gerlando R, Scatassa ML, Cardamone C, Mancuso I, Sardina MT, Moschetti G, Portolano B, Settanni L. 2016b. Microbial activation of wooden vats used for traditional cheese production and evolution of the neo-formed biofilms. Appl. Environ. Microb. 82, 585–595.

Gaglio R, Francesca N, Di Gerlando R, Mahony J, De Martino S, Stucchi C, Moschetti G, Settanni L. 2017. Enteric bacteria of food ice and their survival in alcoholic beverages and soft drinks. Food Microbiol. 67, 17–22.

Garrido-Fernández A, Fernández Díez MJ, Adams MR. 1997. Table Olives, Production and Processing. Champman and Hall, London.

Holzapfel WH. 2002. Appropriate starter culture technologies for small-scale fermentation in developing countries. Int. J. Food Microbiol. 75, 197–212.

Hurtado A, Reguant C, Esteve-Zarzoso B, Bordons A, Rozès N. 2008. Microbial population dynamics during the processing of Arbequina table olives. Food Res. Int. 41, 738–744.

Hurtado A, Reguant C, Bordons A, Rozès N. 2012. Lactic acid bacteria from fermented table olives. Food Microbiol. 31, 1–8.

Jervis SM, Guthrie B, Guo G, Worch T, Hasted A, Drake MA. 2016. Comparison of Preference Mapping Methods on Commodity Foods with Challenging Groups of Low- Variance Attributes: Sliced Whole Wheat Sandwich Bread Example. J. Sens. Stud. 31, 34–49.

Kontkanen D, Inglis DL, Pickering GJ, Reynolds A. 2004. Effect of yeast inoculation rate, acclimatization, and nutrient addition on icewine fermentation. Am. J. Enol. Viticult. 55, 363–370.

Marsilio V, d'Andria R, Lanza B, Russi F, Iannucci E, Lavini A, Morelli G. 2006. Effect of irrigation and lactic acid bacteria inoculants on the phenolic fraction, fermentation and sensory characteristics of olive (Olea europaea L. cv. Ascolana tenera) fruits. J. Sci. Food Agr. 86, 1005–1013. https://doi.org/10.1002/jsfa.2449

Martorana A, Alfonzo A, Settanni L, Corona O, La Croce F, Caruso T, Moschetti G, Francesca N. 2015. An innovative method to produce green table olives based on "pied de cuve" technology. Food Microbiol. 50, 126–140.

Martorana A, Alfonzo A, Settanni L, Corona O, La Croce F, Caruso T, Moschetti G, Francesca N. 2016. Effect of the mechanical harvest of drupes on the quality characteristics of green fermented table olives. J. Sci. Food Agr. 96, 2004–2017.

Martorana A, Alfonzo A, Gaglio R, Settanni L, Corona O, La Croce F, Vagnoli P, Caruso T, Moschetti G, Francesca N. 2017a. Evaluation of different conditions to enhance the performances of Lactobacillus pentosus OM13 during industrial production of Spanish-style table olives. Food Microbiol. 61, 150–158. https://doi.org/10.1016/j.fm.2016.08.007

Martorana A, Di Miceli C, Alfonzo A, Settanni L, Gaglio R, Caruso T, Moschetti G, Francesca N. 2017b. Effects of irrigation treatments on the quality of table olives produced with the Greek-style process. Ann. Microbiol. 67, 37–48.

Moschetti G, Corona O, Gaglio R, Squadrito M, Parrinello A, Settanni L, Barone E, Francesca N. 2016. Use of fortified pied de cuve as an innovative method to start spontaneous alcoholic fermentation for red winemaking. Aust. J. Grape Wine R. 22, 36–45.

Oliveira T, Ramalhosa E, Nunes L, Pereira JA, Colla E, Pereira EL. 2017. Probiotic potential of indigenous yeasts isolated during the fermentation of table olives from Northeast of Portugal. Innov. Food Sci. Emerg. In press.

Panagou EZ, Tassou CC, Katsaboxakis CZ. 2003. Induced lactic acid fermentation of untreated green olives of the Conservolea cultivar by Lactobacillus pentosus. J. Sci. Food Agr. 83, 667–674.

Randazzo CL, Todaro A, Pino A, Pitino I, Corona O, Caggia C. 2017. Microbiota and metabolome during controlled and spontaneous fermentation of Nocellara Etnea table olives. Food Microbiol. 65, 136–148.

Rodríguez-Gómez F, Romero-Gil V, Bautista-Gallego J, Garrido- Fernández A, Arroyo López FN. 2012. Multivariate analysis to discriminate yeasts strains with technological applications in table olive processing. World J. Microb. Biot. 28, 1761–1770.

Sabatini N, Marsilio V. 2008. Volatile compounds in table olives (Olea europaea L., Nocellara del Belice cultivar). Food Chem. 107, 1522–1528.

Servili M, Settanni L, Veneziani G, Esposto S, Massitti O, Taticchi A, Urbani S, Montedoro GF, Corsetti A. 2006. The use of Lactobacillus pentosus 1MO to shorten the debittering process time of black table olives (Cv. Itrana and Leccino): a pilot-scale application. J. Agr. Food Chem. 54, 3869–3875.

Teixeira P, Castro H, Kirby R. 1995. Spray drying as a method for preparing concentrated cultures of Lactobacillus bulgaricus. J. Appl. Microbiol. 78, 456–462.

Torriani S, Felis GE, Dellaglio F. 2001. Differentiation of Lactobacillus plantarum, L. pentosus, and L. paraplantarum by recA gene sequence analysis and multiplex PCR assay with recA gene-derived primers. Appl. Environ. Microb. 67, 3450– 3454. https://doi.org/10.1128/AEM.67.8.3450-3454.2001

Weisburg WG, Barns SM, Pelletier DA, Lane DJ. 1991. 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J. Bacteriol. 173, 697–703.

Publicado

2018-09-30

Cómo citar

1.
Alfonzo A, Martorana A, Settanni L, Matraxia M, Corona O, Vagnoli P, Caruso T, Moschetti G, Francesca N. Aproximaciones para mejorar el crecimiento de bacterias lácticas iniciadoras OM13 durante las primeras etapas de producción de aceitunas verdes de mesa estilo español. Grasas aceites [Internet]. 30 de septiembre de 2018 [citado 23 de febrero de 2025];69(3):e265. Disponible en: https://grasasyaceites.revistas.csic.es/index.php/grasasyaceites/article/view/1733

Número

Sección

Investigación